离效液相色谱-串联廣谱法检测大豆和土壤中
嗜禾__及代谢物的残留
李岩1，郑杨、柴桂香2，李立军、孟宪科1
(1.黑龙江省农药管理检定站，黑龙江哈尔滨150090;2.东宁市农业技术推广中心，黑龙江东宁157200)
Determination of Quizalofop - P - tefuryl and Metabolites Residue in Soybean and Soil by HPLC-MS/MS
Li Yany Zheng Yang，Li Lijun，Meng xianke (Institute for the Control of Agrochemicals of Hei
longjiang Province, Harbin Heilongjiang 150090, China)
Chai Guixiang ( Center for the Extension of Agriculture Technology of Dongning City, Dongning
Heilongjiang 157200, China)
Abstract ： The decline and final residue of quizalofop - P - tefuryl and quizalofop metabolites in
soybean and soil was determined by HPLC - MS/MS. The sample was extracted with HC1 mixture and acetonitrile, purified by filling of graphite carbon black and Cl8, and quantified by external standard method. The result showed that the average recoveries of quizalofop - P - tefuryl and quiza- lofop metabolites in soybean plants and soil were 82. 4% 〜95. 3% and 90. 4% 〜101. 9% , respec- tively, that the standard deviation was 2. 8% 〜10. 3% and 2. 1% 〜10. 9% , respectively. The limit of quantification for quizalofop - P - tefuryl and quizalofop metabolites in soybean seed was
0. 01 mg/kg and 0. 005 mg/kg in soybean plants, green soybean and soil, respectively. The half 一 life was 7. Od in soybean plants and 1.7d 〜2. Od in soil. The final residual concentration was be
low 0. 005 mg/kg in soybean and below 0. 01 mg/kg in soil.
Key words： quizalofop - P - tefuryl； quizalofop； metabolites； soybean； soil； residue.
摘要.•利用高效液相色谱-串联质谱法检测大豆及土壤中喹禾糠酯和代谢物喹禾灵酸的 残留及消解动态。样品用盐酸混合液和乙腈提取，石墨炭黑和C18填料净化，高效液相色谱
收稿日期：2019 -4-15
作者简介：李岩，男，高级农艺师，主要从事农药质量与残留检测及农药管理工作。联系电话：132745〇5654, 0451
-82269081; E - mail: lynyl982@ 163. com。
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串联质谱法检测，外标法定量。结果表明，喹禾糠酯及代谢物喹禾灵酸在大豆植株、籽粒、 毛豆、土壤中的添加平均回收率分别为82.4% ~95. 3%、90.4% ~ 101. 9%,相对标准偏差 分别为2.8% ~ 10. 3%、2. 1% ~ 10. 9%。喹禾糠酯及代谢物喹禾灵酸在大豆籽粒上定量限 为0.01mg/kg,在大立植株、毛豆和土壤中的定量限为0.005mg/kg;喹禾糠酯及代谢产物 喹禾灵总量的消解半衰期在大豆植株上为7. 〇d,在土壤上为1.7d和2. 0d,在毛豆和大豆中 的最终残留量分别为<0.005 mg/kg和<0.01 mg/kg。关键词：喹禾糠酯；喹禾灵酸；代谢物，大豆；土壤；残留中图分类号：S482*4; S481+.8文献标志码_• A
文章编号：1002 - 5480 ( 2019 ) 6 -43 -9
1 前言
水机；过滤器：滤膜孔径约〇. 45fxm;电子天平 喹禾糠酯（quizalofop - P - tefuryl):化学名 (XS205DU);打样机（BRAUN CombiMax600); 称（RS) -2- [4- (6-氯喹喔啉-2-氧 高速万能粉碎机（天津泰斯特）；高速匀浆机
基）苯氧基]丙酸-2-四氢呋喃甲基酯，分子 (IKA T18 );小型台式离心机（eppendorf
式C22H21C1N205，相对分子量428.9[1]。喹禾糠 543〇),祸旋混合器（scientific vortex-genie 2), 酯是美国Uniroyal化学公司开发的芳氧苯氧羧酸 真空泵（GAST DOA - P504 - BN),固相萃取装 类的苗后防除阔叶作物田禾本科杂草的新型除 置（SUPELC0 57044),超声波发生器（6100B
草剂，对大多数一年生禾本科杂草有突出防 I型），标准筛：20目。
效[2]，广泛应用于小麦、马铃薯、大豆、油菜、 2. 1.2试剂甲醇：色谱纯；超纯水：二次蒸 棉花、亚麻、甜菜和豌豆等双子叶作物田。
馏水过超纯水机制备（电阻率18. 2 Mfl • cm， 目前，国内关于喹禾糠酯的残留分析已有 25T);乙酸：色谱纯；甲酸铵：色谱纯；乙 报道，张浩等[3]用高效液相色谱法测定大豆中 腈：分析纯；氯化钠：分析纯；盐酸（37%): 喹禾糠酯农药的残留量，王硕[4]等2017年建立 分析纯；1.5mol/L盐酸溶液：量取124.3mL盐 了高效液相色谱串联质谱法检测砜嘧磺隆、喹 酸加入到1 〇〇〇mL的容量瓶中，加500mL水冷 禾糠酯、精喹禾灵及其代谢物在马铃薯植株、 却至室温，再加水至刻度，摇匀备用；石墨炭 土壤及块茎中的残留分析方法。经查询欧盟的 黑填料：40~60 jjun; C18填料：40~60叫；喹 残留物定义，喹禾糠酯的残留物是喹禾糠酯和 禾糠醋标液：含量为l〇|xg/mL,喹禾灵酸标准 喹禾灵酸的总和，以喹禾灵酸计。本文采用高 品：含量为98. 6% ,由德国Dr. Ehrensorfer公司 效液相色谱-串联质谱法监测了 40g/L喹禾糠 提供。酯乳油在大豆和土壤中使用后的残留量及消解 2.2 田间试验
动态，为该药在大豆上合理使用提供了科学 2.2.1消解动态试验试验用药量72 g a. i./
依据。ha,于苗期茎叶喷雾施药1次，同时设空白对
2
材料与方法
照；其中植株消解动态试验小区面积50m2, 土 2. 1 仪器和试剂
壤动态试验选用一块约50m2平整地块。施药后 2.1.1仪器高效液相色谱仪：Agilent 1260, 2、5h, 1、2、3、5、7、10、14、21、30、45d 具有二极管阵列检测器和自动进样器；液质联 采样。植株样品采样：按棋盘式分布，幼苗期 用仪（AgilentLC/MSMIO): ESI 源；艾科超纯
每个小区采集多20株整个植株样本，在生长中
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期每个小区选10个以上采样点，每株分别按 液，放人2. OmL离心管中，待净化。毛豆和植 上、中、下采集植株叶片，每小区每次采样量 株样品：准确称取打样机匀浆处理后的10. 〇g样 >1 kg,切碎混匀，用四分法缩分留样2份各 品于150mL烧杯中，加人10. 0mL1.5moi/L盐 250g。土壤样本采样：随机取点6 ~ 12个，用土 酸溶液和20. OmL乙腈，在高速匀浆机中13 000
钻采集〇~ l〇cm的土壤1~ 2kg，除去杂物，混 rpm匀浆2min,倒入50mL离心管中，加7~10g
匀后用四分法缩分留样2份各250g。植株和土 氯化钠，盖上塞子，剧烈震荡lmin,在4 000
壤样品贴好标签，贮存于-20T冰柜中保存 rpm离心1 min，使乙腈和水相分层，静置
待测。
3〇11^。吸取1.5〇^上清液，放人2.〇1^离心管 2.2.2最终残留量试验试验设2个处理，用 中，待净化。药量48和72g a. i./ha于苗期茎叶喷雾施药1 2. 3. 2. 2
样品净化在上述净化液中加入石墨
次，每个处理3次重复，小区面积30 m2,另设 炭黑填料l〇mg和C,8填料25mg，7 500rpm涡旋 空白对照。毛豆和大豆样本采集：毛豆在收获 振荡lmin,在10 OOOrpm离心lmiric)取上清液 前20 ~30d (大豆在收获时）采样，按棋盘式分 过0. 22 jjuri滤膜至进样瓶中，待测。
布每个小区选10个以上采样点，每株分别按 2.3.3分析测定条件色谱柱：20!^4乂58-
上、中、下采集大豆豆荚，每小区每次采样量 C18 50mm x 4. 6mm (id ) x 1. 8 (xm 不镑钢柱，
多2kg，毛豆用不镑钢刀切碎（大豆脱粒），充 流动相：甲醇+水（〇. 1%乙酸+5irnnol/L甲酸 分混匀，四分法缩分留取2份各250g。土壤样 按）=85+15 (v/v)，流量：0_5mL/min，柱 本采集：随机取点6 ~ 12个，用土钻采集0~ 温：30丈，进样体积：2.CVL，液质离子源：
15cm的土壤l~2kg，除去杂物，混匀后用四分 ESI +,四极杆温度：1001，毛细管电压：
法缩分留样2份各250g。贴好标签，贮存于- 3 500V,雾化气压力：35Psi，干燥气流量：10
20T冰柜中保存待测。L/min,干燥气温度：350T，扫描方式：MRM。
2. 3
检测方法
喹禾灵酸条件：保留时间1.6 min,碰撞气能量 2.3. 1方法原理简述样品中喹禾糠酯和喹禾 17 eV，去簇电压：150 V,定量离子345 >299, 灵酸用乙腈和盐酸混合液提取，氯化钠盐析离 定性离子345 >271。喹禾糠酯条件：保留时间心，上层提取液用石墨炭黑和Cl8填料净化，以 3. 3 min,碰撞气能量18 eV，去簇电压：130 V， 液质联用仪ESI +检测。
定量离子429. 1 >299. 1,定性离子429. 1 >271。 2.3.2样品的制备土壤样品过20目筛，大豆 3
结果分析
样品打碎成粉，植株和毛豆样品切碎后打样机3.1 仪器条件的确定匀浆。3. 1. 1
质谱条件用约lmg/L唼禾灵酸和喹禾
2.3.2. 1
样品提取大豆和土壤样品：准确称
糠酯标准溶液分别在电喷雾电离ESI方式下进行 取大豆粉样品5.0g (土壤样品lO.Og)于50mL 全扫描（m/z 50 ~ 500)，以选择适当的分子离 离心管中，加入l〇.〇mLL5mol/L盐酸溶液和 子峰。结果表明在正离子采集模式下，喹禾灵 20. OmL乙腈摇匀，在涡旋混合器上7 500rpm涡 酸的[M + H]峰m/Z 345和喹禾糠酯的[M +
旋提取匀浆2min，加7~10g氯化钠，盖上塞 H]峰m/zd
l响应值最大。选择上述2个母
子，剧烈震荡lmin，在4 OOOrpm离心lmin，使 离子进行子离子扫描，通过不断改变去簇电压 乙腈和水相分层，静置30minD吸取1.5mL上清
和碰撞能量来优化检测条件，喹禾灵酸m/z 345
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>299在去簇电压150V和碰撞能量17eV时响应 相关系数为R =0.999 2。值最大并且稳定作为定量离子，定性离子对为 3. 4
检测方法的定量限、添加回收率及相对标
m/z 345 >271;喹禾糠酯 m/z 429. 1 >299. 1 在 准偏差在上述色谱条件下，喹禾糠酯和喹禾 去族电压130V和碰撞能量18eV时响应值最大 灵酸在大豆植株、毛豆和土壤样品中定量限为 并且稳定作为定量离子对，定性离子对为m/z 0. 005 mg/kg，在大豆中为0.01 mg/kg。分别在 429. 1 >271 0
空白样品中添加3档浓度的喹禾糠酯和喹禾灵 3. 1.2色谱条件试验表明在流动相中加人甲 酸标样，植株和土壤为〇.〇〇5、0.2、4. Omg/kg， 酸铵缓冲盐时，喹禾糠酯和喹禾灵酸的响应值 大豆为 0.01、0.2、2. Omg/kg,毛豆为 0.005、 明显提高，以甲醇+水（〇. 1%乙酸+5mm〇l/L 0.2、l.Omg/kg，每档重复5次，用上述分析方 甲酸铵）体积比85: 15时，有效成分与杂质能 法进行回收率测定，实验结果表明：喹禾糠酯 得到很好的分离，峰型对称，基线平稳。在大豆植株中的添加回收率为89.9% ~ 95.3%、 3.2前处理方法摸索试样选用乙腈提取，提 相对标准偏差为2.9% ~ 6.0%，在大豆籽粒中 取过程中发现喹禾灵酸的回收率不稳定，通过 的添加回收率为86.7% ~ 92. 9%、相对标准偏 加人盐酸溶液进行改善，最后提取液优化为试 差为2.8% ~5.1%，在毛豆中的添加回收率为 样中先加人1. 5m〇l/L盐酸溶液10mL，在加人乙 82. 4% ~ 92. 1%、相对标准偏差为3. 5% ~ 腈20 mL,喹禾糠酯和喹禾灵酸的回收率良好且 6. 9%，在土壤中的添加回收率为86. 7% ~ 稳定。净化分别选用氨基柱、PSA、石墨化炭黑 90. 5%、相对标准偏差为3. 1% ~ 10_ 3% ;喹禾 和C,8作为净化剂，通过试验发现石墨炭黑填料 灵酸在大豆植株中的添加回收率为98.9% ~ 10mg和C18填料25mg能较好的去除大豆中的油 101.9%、相对标准偏差为2.6% ~ 10. 9%，在 脂和植株中的色素等干扰杂质，取得良好的净 大豆籽粒中的添加回收率为91.6% ~ 99. 0%、 化效果。
相对标准偏差为2.1% ~ 5.1%，在毛豆中的添 3.3标准曲线准确称取喹禾灵酸标样0.017 2 加回收率为98.9% ~ 101. 3%、相对标准偏差为 8(精确至〇.〇〇〇28)，置于10〇!^容量瓶中， 3. 3% ~ 9. 9% ,在土壤中的添加回收率为 用甲醇超声溶解，冷却至室温用甲醇稀释至刻 90. 4% ~ 96. 6%、相对标准偏差为3. 2% ~ 度。将上述标准溶液溶液和l〇mg/L的喹禾糠酯 5.1%。喹禾糠酯和喹禾灵酸的添加回收试验结 标准溶液配制成5. Omg/L的混合标准溶液。用 果分别（表1)。
甲醇稀释配制成0.002 5、0.005、0.01、0.05、 3.5消解动态试验根据1年2地的消解动态 0. 1、0.5、1.0、2. Omg/L系列混合标准溶液, 试验表明，喹禾糠酯在大豆植株中大部分很快 在上述仪器条件下进行测定喹禾糠酯和喹禾灵 就代谢成喹禾灵酸，喹禾糠酯及代谢产物喹禾 酸。以进样浓度（mg/L)为横坐标，色谱峰面 灵酸总量在大豆植株中的原始沉积量为5. 123
积为纵坐标绘制标准曲线图。在〇.〇〇25〜2.0
mg/kg，半衰期为7.0d，消解率5d达到90%，
mg/L浓度范围内，喹禾糠酯色谱峰面积与进样
从大豆植株消解动态试验2地数据来看，差异 浓度呈良好的线性关系，线形方程为：y = 较大，有一地原始沉积量很高，有一地低于定 85 961. 21 x - 99.59，相关系数为 R= 0.999 96; 量限，查看2地田间试验记录，施药和天气情 喹禾灵酸色谱峰面积与进样浓度呈良好的线性 况正常，但施药时2地大豆株高分别为8cm和 关系，线形方程为：y = 19 087. 96x + 106.32,
20cm，作物覆盖率差异较大，可能是植株较大
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Pesticide Science and Administration
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表1
喹禾糠酯和喹禾灵酸的添加回收率试验
回收率（％)
农药名称
样品名称
添加浓度相对标准偏差
(mg/kg)12345平均(%)0. 005
86.6493. 48100. 7888.4690. 7492.06.0植株
0.289.9092.57101.8693. 1298.8995.35.24.088. 2290.8586.5893.5190. 2289.92.90.01
87. 5591.6698. 5089.8397. 1392.95. 1大豆
0.287.4093.0091.2193.4095.0592.03.22.084.2586.6087.8684. 5990. 1486.72.8喹禾糠酯
0.00582. 5480.2679.3487. 1082. 5482.43.6毛豆
0.283.4588. 4592.4996.6599.4892. 16.91.088. 2888.8386.8393.3184.9188.43.50. 005
85. 7393.48103.5178.4389.8390.210.3土壤
0.284. 1187.89100. 6887.8091.9990.57.04.082. 2787.3586.6189.4187.6586.73. 10. 005
104. 9389.9483.51109.21100.6497.610.9植株
0.297.94101.01102. 36103. 07105.28101.92.74.097.77100.4195. 14101.9799. 3398.92.60.01
89.9492.0885.6598.5092.0891.65. 1大豆
0.294. 3292.2194.8295.6390.4093.52.32.096. 2599. 1599.9198.05101.8899.02. 1喹禾灵酸
0. 005109.2185.65102. 78109.2196.36100.69.9毛豆
0.293. 7293.7799.75105. 93101.2698.95.31.0101. 17103. 0399.65105.6396.81101.33.30.005
87.7985.6596.3694. 2287. 7990.45. 1土壤
0.295. 1294. 72102. 5693.5697. 2396.63.74.0
91.52
95.99
93.28
99. 55
96.45
95.4
3.2
对农药起到一定的稀释作用；同时从消解数 代谢产物喹禾灵酸总量在土壤中的原始沉积 据上看，喹禾糠酯在大豆上消解较快，大豆 量为0. 077和0• 245 mg/kg,半衰期为1_ 7d和 植株大小的差异也可能造成代谢消解速率的 2.3d,消解率10d达到90%以上。在从植株和 不同，对于喹禾糠酯在大豆植株上的消解动 土壤消解动态来看，喹禾糠酯在大豆植株和土 态还需要进一步研究。喹禾糠酯在土壤中代 壤中消解很快。消解动态测定结果（表2)和 谢成喹禾灵酸的速率相对放慢，喹禾糠酯及
(表 3)。
表2
喹禾糠酯在大豆植株中消解动态试验
第1地
第2地
采样距施药天数
残留量（mg/kg)
消解率残留量（mg/kg)
消解率喹禾糠酯
喹禾灵酸总量（以喹
禾灵酸计）(%)喹禾糠酯 唼禾灵酸禾灵酸计）
(%)0.083
0. 388
4.811
5.123
/
<0.005
<0.005
/
/
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农药W究 略祐有戌 Pesticide Science and Administration 2019,40(6)
续表
第1地
第2地
采样距施药天数
残留量（mg/kg)
残留量（mg/kg)
(d)
消解率消解率喹禾糠酯
总量（以喹
喹禾灵酸麵计）(%)喹禾糠酯喹禾灵酸总量（以喹
禾灵酸计）
(%)0. 2080. 1061.3101.39572.8<0. 005<0. 005/
/10. 0671.0451.09978.5<0. 005<0. 005//20.0761. 1861.24775.7<0. 005<0.005//30. 0720.7150.77384.9<0.005<0. 005//50.0150.5070.51989.9<0. 005<0. 005//70.0130.2870. 29794.2<0. 005<0. 005//100.0140. 2440. 25595.0<0. 005<0.005//140. 0080. 1390. 14597.2<0. 005<0. 005//21<0. 0050. 0470. 04799. 1<0. 005<0. 005//30<0. 0050. 0430. 043
99.2<0. 005<0. 005//45<0. 005
0.037
0.037
99.3
<0. 005
<0. 005
/
/
方程C = 1.092 8e-0.0991
/R20. 779/T./2
7.0
/
注：喹禾糠酯换算成喹禾灵酸的系数344. 8/428. 9为0. 804。
表3喹禾糠酯在土壤中消解动态试验
第1地
第2地
采样距施药天数
残留量（mg/lcg)
(d)
喹禾糠酯
总童（以喹
消解率残留量（mg/kg)
总量（以唼
消解率
喹禾灵酸禾灵酸计）(%)喹禾糠酯喹禾灵酸禾灵酸计）(%)0.0830.0540. 2020. 245/0.0110. 0680.077/0.2080. 1810. 1310. 277/0.0110.0630.0726.510. 1760. 1050. 246/0.0160. 0470. 06022. 120.2680.0880.303/<0. 0050.0280.02863.630. 1380.0510. 16246.5<0. 0050.0230.02370. 15<0. 0050.0410.04186.5<0. 0050.0130.01383. 17<0. 0050.0280.02890.8<0. 0050.0110.01185.710<0. 0050.0120.01296.0<0. 005<0. 005//14<0. 005<0. 005//<0. 005<0. 005//21<0. 005<0. 005//<0. 005<0. 005//30<0. 005<0. 005//<0. 005<0. 005//45<0. 005
<0. 005
/
/
<0. 005
<0. 005
/
/
方程C =0.498 le-0.3971
C =0.068 9e-0 31
R20. 938 60. 927 3Ti/2
1.7
2.3
注：喹禾糠酯换算成喹禾灵酸的系数344. 8/428. 9为0.804:
3.6最终残留量测定结果40g/L喹禾糠酯乳 中残留量均<0.005mg/kg,在大豆中残留量均油在大豆苗期以用药量48和72g a. i./ha施药1 <0. Olmg/kg;在土壤中残留量为<0. 005 mg/kg ~次，喹禾糠酯及代谢产物喹禾灵酸总量在毛豆
0.009 mg/kg。
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4结论
研究建立了一种快速、简便、灵敏度高的
残留分析要求。
喹禾糠酯及代谢产物喹禾灵酸总量在大豆 植株及土壤中的消解符合一级动力学方程，消 解半衰期大豆植株为7.0d, 土壤为1.7 d和 2. 0d。喹禾糠酯及代谢产物喹禾灵酸总量在毛 豆中的最终残留量均低于0.005 mg/kg,在收获 大豆籽粒中的最终残留量均低于〇.〇1 mg/kg。
我国未规定喹禾糠酯在大豆中的最大残留 限量，澳大利亚规定豆类为0.2 mg/kg，欧盟规 定大豆为〇. lmg/kg;同时我国规定喹禾灵在大 豆和菜用大豆上的最大残留限量分别为〇. lmg/
kg和0.2mg/kg。根据我国膳食结构及试验数
检测大豆中喹禾糠酯及代谢产物喹禾灵酸的残 留分析方法。样品经盐酸溶液和乙腈提取，石 墨炭黑和CIS填料净化，高效液相色谱-串联质 谱法检测。检测结果表明：喹禾糠酯及代谢产 物喹禾灵酸在大豆籽粒上定量限为〇. 〇lmg/kg， 在大豆植株、毛豆和土壤中的定量限为 0.005mg/kg;在不同的3档添加浓度下，植株 和土壤 0.005、0.2、4. Omg/kg、大豆为 0.01、 0• 2、2. Omg/kg、毛丑为 0.005、0.2、l.Omg/
kg，喹禾糠酯的添加平均回收率为82.4% ~
95. 3%，相对标准偏差为2_ 8% ~ 10. 3% ;喹禾 灵酸的添加平均回收率为90.4% ~ 101. 9%，相 对标准偏差为2.1% ~ 10.9%。方法的重现性 好，准确度、精密度及检出限均可满足该药的
据，综合考虑，建议我国喹禾糠酯残留物为喹 禾糠酯和喹禾灵酸之和，以喹禾灵酸计，喹禾 糠酯在苗期茎叶喷雾防治大豆一年生禾本科杂 草，推荐用药量80g a. i./ha,最多施药1次。
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喹禾糠酯和喹*灵酸标样谱图（0.1 mg/L )
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大面好粒空白谱图
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Pesticide Science and Administration
2019,40(6)
x«)< <3nrMr<^r«MVGPCi7〇pco->aBC>dnid
xn' «wMFairtnvcxen〇(4ai->ai)«iDaEHii>iz-i xb* <〇Kn^r>v^SD 毛 随图（0.2 mg/L ) «t>2 i(DWWt^ngMVCPCI70〇C0-»2EBa«tC^P»»«»1 Cb>»vj.A]}MlcnT1n« 土麻甜I腿图（0.2 mg/L )大豆植株样品谱图（动态2h) —50 — Pesticide Science and Administration 2019,40(6) 」 々 链样品谱图(雖碰) 参考文献 The Pesticide Manual 2009. 高同春，王梅，王振荣，赵红，汤凡清.4%喷特 乳油防除夏大豆田杂草的药效试验[J].安徽农 业科学，2000, 28 (3): 334 -335, 337. 张浩，王岩，刘冬华，逯忠斌.高效液相色谱法测 定大豆中喹禾糠酯农药的残留置[J].色谱， 2005, 23 (1)： 113. 王硕，侯志广，赵晓峰，王鑫宏，逯忠斌.砜嘧磺 隆、喹禾糠酯、精喹禾灵及其代谢物在马铃薯植 株、土壤及块茎中的残留分析方法[J].农药， 2017, 10：750 -753. <<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<<< 法国拟2020年废除草甘膦的使用 法国农业部提出了一项行动计划，拟于 该计划源于法国总统马克龙在去年年初作 2020年底，逐步停止“存在可替代产品”的草 出承诺，也就是在三年内逐步废除草甘膦的使 甘膦产品的使用，在2022年之前停止所有草甘 用。2018年11月，法国农业和生态部长再次确 膦产品的使用。农业部指出，农民们一定会获 认了该项计划。但在今年1月，法国总统表示 得解决办法。此项计划还提出到2020年年底减 不能保证三年内彻底废除草甘膦的使用。 少25%农用化学品的使用量，到2025年减 白孟卿农业农村部农药检定所 少 50%。 (译自《入呂1'训》1^〇.20丨90514) —51 — 因篇幅问题不能全部显示，请点此查看更多更全内容